Thanh bên bài viết
Số xuất bản:
2026: Bài chờ xuất bản chuyên san Khoa học Tự nhiên
Chuyên mục:
Khoa học Tự nhiên (Tiếng Việt)
Ngày xuất bản:
03/05/2026
Lượt xem
23
Trích dẫn bài báo
Phạm, T. P. L., Nguyễn, N. Y. N., Nguyễn, T. T. L., Lê, N. N., Nguyễn, M. T., & Phạm, T. M. T. (2026). Tối ưu hóa quá trình trích ly polyphenol tổng, flavonoid tổng và đánh giá khả năng kháng oxy hóa từ dịch chiết trái vả (ficus auriculata) với sự hỗ trợ của vi sóng. Tạp chí Khoa học Đại học Đồng Tháp, Online First. https://doi.org/10.52714/dthu.ns.3267.2003
Định dạng trích dẫn:
##plugins.generic.badges.manager.settings.showBlockTitle##
Tối ưu hóa quá trình trích ly polyphenol tổng, flavonoid tổng và đánh giá khả năng kháng oxy hóa từ dịch chiết trái vả (ficus auriculata) với sự hỗ trợ của vi sóng
Nội dung chính của bài viết
Tóm tắt
Nghiên cứu này nhằm tối ưu hóa quá trình trích ly polyphenol tổng (TPC), flavonoid tổng (TFC) và đánh giá hoạt tính kháng oxy hóa thông qua khả năng bắt gốc tự do DPPH của dịch chiết từ trái vả (Ficus auriculata) bằng phương pháp trích ly có hỗ trợ vi sóng (MAE) kết hợp với phương pháp bề mặt đáp ứng (RSM). Ba yếu tố công nghệ được khảo sát bao gồm tỷ lệ nguyên liệu:dung môi (ethanol 70%), công suất vi sóng và nhiệt độ trích ly sau vi sóng, trong đó thời gian xử lý vi sóng (60 giây) và thời gian trích ly sau vi sóng (30 phút) được giữ cố định. Kết quả tối ưu hóa cho thấy điều kiện trích ly thích hợp là tỷ lệ nguyên liệu:dung môi 1:21 g/mL, công suất 180 W và nhiệt độ 55oC. Tại điều kiện này, TPC đạt 2,923 ± 0,125 gGAE/100gCK, TFC đạt 0,164 ± 0,002 gQE/100gCK và khả năng kháng oxy hóa khá cao 88,870 ± 0,316%. Giá trị thực nghiệm sai lệch dưới 5% so với giá trị dự đoán, khẳng định độ tin cậy cao của mô hình. Kết quả nghiên cứu cho thấy trái vả là nguồn nguyên liệu tự nhiên giàu hợp chất sinh học, có tiềm năng ứng dụng làm chất chống oxy hóa trong lĩnh vực dược phẩm và thực phẩm chức năng.
Từ khóa
Ficus auriculata, Flavonoid tổng, Hoạt tính kháng oxy hóa, Polyphenol tổng, Tối ưu hóa
Chi tiết bài viết
Bài báo này được cấp phép theo Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License.
Tài liệu tham khảo
Ahmad, Z., Rauf, A., Orhan, I. E., Mubarak, M. S., Akram, Z., Islam, M. R., Imran, M., Edis, Z., Kondapavuluri, B. K., Thangavelu, L., & Thiruvengadam, M. (2025). Antioxidant Potential of Polyphenolic Compounds, Sources, Extraction, Purification and Characterization Techniques: A Focused Review. In Food Science and Nutrition (Vol. 13, Number 12). John Wiley and Sons Inc. https://doi.org/10.1002/fsn3.71259
Ambreen, S., Tariq, M., Masoud, M. S., Ali, I., Qasim, M., Mushtaq, A., Ahmed, M., & Asghar, R. (2021). Anticoagulant potential and total phenolic content of six species of the genus Ficus from Azad Kashmir, Pakistan. Tropical Journal of Pharmaceutical Research, 18(6), 1245–1251. https://doi.org/10.4314/TJPR.V18I6.14
Baharuddin, N. A. F., Nordin, M. F. M., Morad, N. A., Aris, N. I. A., & Yunus, M. A. C. (2018). Total phenolic, flavonoid content and antioxidant activity of Clinacanthus nutans leaves by water-based ultrasonic assisted extraction. Malaysian Journal of Analytical Sciences, 22(4), 659–666. https://doi.org/10.17576/mjas-2018-2204-12
Bai, X. L., Yue, T. L., Yuan, Y. H., & Zhang, H. W. (2010). Optimization of microwave-assisted extraction of polyphenols from apple pomace using response surface methodology and HPLC analysis. Journal of Separation Science, 33(23–24), 3751–3758. https://doi.org/10.1002/jssc.201000430
Baliyan, S., Mukherjee, R., Priyadarshini, A., Vibhuti, A., Gupta, A., Pandey, R. P., & Chang, C. M. (2022). Determination of Antioxidants by DPPH Radical Scavenging Activity and Quantitative Phytochemical Analysis of Ficus religiosa. Molecules, 27(4). https://doi.org/10.3390/molecules27041326
Bhatt, S. C., Kumar, V., Naik, B., Gupta, A. K., Saris, P. E. J., Kumar, V., Rajput, V., & Rustagi, S. (2024). Ficus auriculata Lour., an underutilized nonconventional alternative fruit to Ficus carica with nutraceutical potential. In Discover Sustainability (Vol. 5, Number 1). Springer Nature. https://doi.org/10.1007/s43621-024-00480-3
Casazza, A. A., Aliakbarian, B., & Perego, P. (2011). Recovery of phenolic compounds from grape seeds: Effect of extraction time and solid-liquid ratio. Natural Product Research, 25(18), 1751–1761. https://doi.org/10.1080/14786419.2010.524889
Castro-Vargas, H. I., Baumann, W., Ferreira, S. R. S., & Parada-Alfonso, F. (2019). Valorization of papaya (Carica papaya L.) agroindustrial waste through the recovery of phenolic antioxidants by supercritical fluid extraction. Journal of Food Science and Technology, 56(6), 3055–3066. https://doi.org/10.1007/s13197-019-03795-6
Cui, H., Lu, T., Wang, M., Zou, X., Zhang, Y., Yang, X., Dong, Y., & Zhou, H. (2019). Flavonoids from morus alba L. Leaves: Optimization of extraction by response surface methodology and comprehensive evaluation of their antioxidant, antimicrobial, and inhibition of α-amylase activities through analytical hierarchy process. Molecules, 24(13). https://doi.org/10.3390/molecules24132398
Đại Nghiệp, N., Liêu, N., My, T., Hoàng, N., & Ly, T. (2024). Khảo sát điều kiện trích ly polyphenol và khả năng kháng oxy hóa của cao chiết từ hoa hòe (Styphnolobium japonicum).
Ganesapillai, M., Venugopal, A., & Simha, P. (2017). Preliminary isolation, recovery and characterization of polyphenols from waste Tamarindus indica L. Materials Today: Proceedings, 4(9), 10658–10661. https://doi.org/10.1016/j.matpr.2017.06.438
Gebicki, J. M., & Nauser, T. (2021). Fast antioxidant reaction of polyphenols and their metabolites. In Antioxidants (Vol. 10, Number 8). MDPI. https://doi.org/10.3390/antiox10081297
Huang, W., Yang, L., Lv, Q.-Z., Long, J.-T., Gong, Z.-F., Nong, K.-Y., Liang, X.-M., & Qin, T. (2021). Current State of Knowledge on the Antioxidant Effects and Mechanisms of Action of Polyphenolic Compounds Classification of Polyphenolic Compounds and an Overview of Their Biological Functions. In Natural Product Communications (Vol. 16, Number 7).
Islam, M. R., Kamal, M. M., Kabir, M. R., Hasan, M. M., Haque, A. R., & Hasan, S. M. K. (2023). Phenolic compounds and antioxidants activity of banana peel extracts: Testing and optimization of enzyme-assisted conditions. Measurement: Food, 10. https://doi.org/10.1016/j.meafoo.2023.100085
Laina, K. T., Drosou, C., Stergiopoulos, C., Eleni, P. M., & Krokida, M. (2024). Optimization of Combined Ultrasound and Microwave-Assisted Extraction for Enhanced Bioactive Compounds Recovery from Four Medicinal Plants: Oregano, Rosemary, Hypericum, and Chamomile. Molecules, 29(23). https://doi.org/10.3390/molecules29235773
López-Salazar, H., Camacho-Díaz, B. H., Arenas Ocampo, M. L., & Jiménez-Aparicio, A. R. (2023). Microwave-assisted extraction of functional compounds from plants: A review. Bioresources. BioResources, 18(3), 6614–6638.
Phan, P. M., Nguyen, T. D., Nguyen, P. H., Vo, V. T. T., Vu, A. T., & Anh, V. T. (2021). Optimization of extraction conditions of flavonoids from Houttuynia cordata Thumb leaves. www.jad.hcmuaf.edu.vn
Rudrapal, M., Maji, S., Prajapati, S. K., Kesharwani, P., Deb, P. K., Khan, J., Ismail, R. M., Kankate, R. S., Sahoo, R. K., Khairnar, S. J., & Bendale, A. R. (2022). Protective Effects of Diets Rich in Polyphenols in Cigarette Smoke (CS)‐Induced Oxidative Damages and Associated Health Implications. In Antioxidants (Vol. 11, Number 7). MDPI. https://doi.org/10.3390/antiox11071217
Rumpf, J., Burger, R., & Schulze, M. (2023). Statistical evaluation of DPPH, ABTS, FRAP, and Folin-Ciocalteu assays to assess the antioxidant capacity of lignins. International Journal of Biological Macromolecules, 233, 123470. https://doi.org/10.1016/J.IJBIOMAC.2023.123470
Shahinuzzaman, M., Akhtar, P., Amin, N., Ahmed, Y., Anuar, F. H., Misran, H., & Akhtaruzzaman, M. (2021). New insights of phenolic compounds from optimized fruit extract of Ficus auriculata. Scientific Reports, 11(1). https://doi.org/10.1038/s41598-021-91913-w
Tay, P. Y., Tan, C. P., Abas, F., Yim, H. S., & Ho, C. W. (2014). Assessment of extraction parameters on antioxidant capacity, polyphenol content, epigallocatechin gallate (EGCG), epicatechin gallate (ECG) and iriflophenone 3-C-β-glucoside of agarwood (Aquilaria crassna) young leaves. Molecules, 19(8), 12304–12319. https://doi.org/10.3390/molecules190812304
V. González-de-Peredo, A., Vázquez-Espinosa, M., Espada-Bellido, E., Ferreiro-González, M., F. Barbero, G., Palma, M., & Carrera, C. (2022). Optimization of a Microwave Assisted Extraction Method for Maximum Flavonols and Antioxidant Activity of Onion Extracts. Antioxidants, 11(12). https://doi.org/10.3390/antiox11122393
Võ, T. T., Nguyễn, T. K. T., Võ, T. T., Tạ, N. T., Lê, B. T., & Phan, T. O. (2023a). Khảo sát một số yếu tố ảnh hưởng đến khả năng trích ly hợp chất polyphenol và flavonoid từ lá dâu tằm (Moruss Alba L.). Dong Thap University Journal of Science, 12(8), 88–94. https://doi.org/10.52714/dthu.12.8.2023.1156
Võ, T. T., Nguyễn, T. K. T., Võ, T. T., Tạ, N. T., Lê, B. T., & Phan, T. O. (2023b). Khảo sát một số yếu tố ảnh hưởng đến khả năng trích ly hợp chất polyphenol và flavonoid từ lá dâu tằm (Moruss Alba L.). Dong Thap University Journal of Science, 12(8), 88–94. https://doi.org/10.52714/dthu.12.8.2023.1156
Xiao, W., Han, L., & Shi, B. (2008). Microwave-assisted extraction of flavonoids from Radix Astragali. Separation and Purification Technology, 62(3), 614–618. https://doi.org/10.1016/j.seppur.2008.03.025
Zhang, M., Ma, W., Wang, C., Yang, X., Lou, Y., Xia, X., & Xu, H. (2021). Optimization of enzyme-assisted extraction and purification of flavonoids from Pinus koraiensis nut-coated film and antioxidant activity evaluation. Molecules, 26(7). https://doi.org/10.3390/molecules26071950
Ambreen, S., Tariq, M., Masoud, M. S., Ali, I., Qasim, M., Mushtaq, A., Ahmed, M., & Asghar, R. (2021). Anticoagulant potential and total phenolic content of six species of the genus Ficus from Azad Kashmir, Pakistan. Tropical Journal of Pharmaceutical Research, 18(6), 1245–1251. https://doi.org/10.4314/TJPR.V18I6.14
Baharuddin, N. A. F., Nordin, M. F. M., Morad, N. A., Aris, N. I. A., & Yunus, M. A. C. (2018). Total phenolic, flavonoid content and antioxidant activity of Clinacanthus nutans leaves by water-based ultrasonic assisted extraction. Malaysian Journal of Analytical Sciences, 22(4), 659–666. https://doi.org/10.17576/mjas-2018-2204-12
Bai, X. L., Yue, T. L., Yuan, Y. H., & Zhang, H. W. (2010). Optimization of microwave-assisted extraction of polyphenols from apple pomace using response surface methodology and HPLC analysis. Journal of Separation Science, 33(23–24), 3751–3758. https://doi.org/10.1002/jssc.201000430
Baliyan, S., Mukherjee, R., Priyadarshini, A., Vibhuti, A., Gupta, A., Pandey, R. P., & Chang, C. M. (2022). Determination of Antioxidants by DPPH Radical Scavenging Activity and Quantitative Phytochemical Analysis of Ficus religiosa. Molecules, 27(4). https://doi.org/10.3390/molecules27041326
Bhatt, S. C., Kumar, V., Naik, B., Gupta, A. K., Saris, P. E. J., Kumar, V., Rajput, V., & Rustagi, S. (2024). Ficus auriculata Lour., an underutilized nonconventional alternative fruit to Ficus carica with nutraceutical potential. In Discover Sustainability (Vol. 5, Number 1). Springer Nature. https://doi.org/10.1007/s43621-024-00480-3
Casazza, A. A., Aliakbarian, B., & Perego, P. (2011). Recovery of phenolic compounds from grape seeds: Effect of extraction time and solid-liquid ratio. Natural Product Research, 25(18), 1751–1761. https://doi.org/10.1080/14786419.2010.524889
Castro-Vargas, H. I., Baumann, W., Ferreira, S. R. S., & Parada-Alfonso, F. (2019). Valorization of papaya (Carica papaya L.) agroindustrial waste through the recovery of phenolic antioxidants by supercritical fluid extraction. Journal of Food Science and Technology, 56(6), 3055–3066. https://doi.org/10.1007/s13197-019-03795-6
Cui, H., Lu, T., Wang, M., Zou, X., Zhang, Y., Yang, X., Dong, Y., & Zhou, H. (2019). Flavonoids from morus alba L. Leaves: Optimization of extraction by response surface methodology and comprehensive evaluation of their antioxidant, antimicrobial, and inhibition of α-amylase activities through analytical hierarchy process. Molecules, 24(13). https://doi.org/10.3390/molecules24132398
Đại Nghiệp, N., Liêu, N., My, T., Hoàng, N., & Ly, T. (2024). Khảo sát điều kiện trích ly polyphenol và khả năng kháng oxy hóa của cao chiết từ hoa hòe (Styphnolobium japonicum).
Ganesapillai, M., Venugopal, A., & Simha, P. (2017). Preliminary isolation, recovery and characterization of polyphenols from waste Tamarindus indica L. Materials Today: Proceedings, 4(9), 10658–10661. https://doi.org/10.1016/j.matpr.2017.06.438
Gebicki, J. M., & Nauser, T. (2021). Fast antioxidant reaction of polyphenols and their metabolites. In Antioxidants (Vol. 10, Number 8). MDPI. https://doi.org/10.3390/antiox10081297
Huang, W., Yang, L., Lv, Q.-Z., Long, J.-T., Gong, Z.-F., Nong, K.-Y., Liang, X.-M., & Qin, T. (2021). Current State of Knowledge on the Antioxidant Effects and Mechanisms of Action of Polyphenolic Compounds Classification of Polyphenolic Compounds and an Overview of Their Biological Functions. In Natural Product Communications (Vol. 16, Number 7).
Islam, M. R., Kamal, M. M., Kabir, M. R., Hasan, M. M., Haque, A. R., & Hasan, S. M. K. (2023). Phenolic compounds and antioxidants activity of banana peel extracts: Testing and optimization of enzyme-assisted conditions. Measurement: Food, 10. https://doi.org/10.1016/j.meafoo.2023.100085
Laina, K. T., Drosou, C., Stergiopoulos, C., Eleni, P. M., & Krokida, M. (2024). Optimization of Combined Ultrasound and Microwave-Assisted Extraction for Enhanced Bioactive Compounds Recovery from Four Medicinal Plants: Oregano, Rosemary, Hypericum, and Chamomile. Molecules, 29(23). https://doi.org/10.3390/molecules29235773
López-Salazar, H., Camacho-Díaz, B. H., Arenas Ocampo, M. L., & Jiménez-Aparicio, A. R. (2023). Microwave-assisted extraction of functional compounds from plants: A review. Bioresources. BioResources, 18(3), 6614–6638.
Phan, P. M., Nguyen, T. D., Nguyen, P. H., Vo, V. T. T., Vu, A. T., & Anh, V. T. (2021). Optimization of extraction conditions of flavonoids from Houttuynia cordata Thumb leaves. www.jad.hcmuaf.edu.vn
Rudrapal, M., Maji, S., Prajapati, S. K., Kesharwani, P., Deb, P. K., Khan, J., Ismail, R. M., Kankate, R. S., Sahoo, R. K., Khairnar, S. J., & Bendale, A. R. (2022). Protective Effects of Diets Rich in Polyphenols in Cigarette Smoke (CS)‐Induced Oxidative Damages and Associated Health Implications. In Antioxidants (Vol. 11, Number 7). MDPI. https://doi.org/10.3390/antiox11071217
Rumpf, J., Burger, R., & Schulze, M. (2023). Statistical evaluation of DPPH, ABTS, FRAP, and Folin-Ciocalteu assays to assess the antioxidant capacity of lignins. International Journal of Biological Macromolecules, 233, 123470. https://doi.org/10.1016/J.IJBIOMAC.2023.123470
Shahinuzzaman, M., Akhtar, P., Amin, N., Ahmed, Y., Anuar, F. H., Misran, H., & Akhtaruzzaman, M. (2021). New insights of phenolic compounds from optimized fruit extract of Ficus auriculata. Scientific Reports, 11(1). https://doi.org/10.1038/s41598-021-91913-w
Tay, P. Y., Tan, C. P., Abas, F., Yim, H. S., & Ho, C. W. (2014). Assessment of extraction parameters on antioxidant capacity, polyphenol content, epigallocatechin gallate (EGCG), epicatechin gallate (ECG) and iriflophenone 3-C-β-glucoside of agarwood (Aquilaria crassna) young leaves. Molecules, 19(8), 12304–12319. https://doi.org/10.3390/molecules190812304
V. González-de-Peredo, A., Vázquez-Espinosa, M., Espada-Bellido, E., Ferreiro-González, M., F. Barbero, G., Palma, M., & Carrera, C. (2022). Optimization of a Microwave Assisted Extraction Method for Maximum Flavonols and Antioxidant Activity of Onion Extracts. Antioxidants, 11(12). https://doi.org/10.3390/antiox11122393
Võ, T. T., Nguyễn, T. K. T., Võ, T. T., Tạ, N. T., Lê, B. T., & Phan, T. O. (2023a). Khảo sát một số yếu tố ảnh hưởng đến khả năng trích ly hợp chất polyphenol và flavonoid từ lá dâu tằm (Moruss Alba L.). Dong Thap University Journal of Science, 12(8), 88–94. https://doi.org/10.52714/dthu.12.8.2023.1156
Võ, T. T., Nguyễn, T. K. T., Võ, T. T., Tạ, N. T., Lê, B. T., & Phan, T. O. (2023b). Khảo sát một số yếu tố ảnh hưởng đến khả năng trích ly hợp chất polyphenol và flavonoid từ lá dâu tằm (Moruss Alba L.). Dong Thap University Journal of Science, 12(8), 88–94. https://doi.org/10.52714/dthu.12.8.2023.1156
Xiao, W., Han, L., & Shi, B. (2008). Microwave-assisted extraction of flavonoids from Radix Astragali. Separation and Purification Technology, 62(3), 614–618. https://doi.org/10.1016/j.seppur.2008.03.025
Zhang, M., Ma, W., Wang, C., Yang, X., Lou, Y., Xia, X., & Xu, H. (2021). Optimization of enzyme-assisted extraction and purification of flavonoids from Pinus koraiensis nut-coated film and antioxidant activity evaluation. Molecules, 26(7). https://doi.org/10.3390/molecules26071950