Khảo sát điều kiện làm giàu polyphenol trong cao chiết phụ phẩm gương sen bằng nhựa D 101

Huỳnh Nguyễn Thúy Vy1, Nguyễn Ngô Thái Vy1, Nguyễn Hồng Sơn1, Nguyễn Thị Hồng Hạnh2,
1 Sinh viên, Khoa Sư phạm Khoa học Tự nhiên, Trường Sư phạm, Trường Đại học Đồng Tháp, Việt Nam
2 Khoa Sư phạm Khoa học Tự nhiên, Trường Sư phạm, Trường Đại học Đồng Tháp, Việt Nam

Nội dung chính của bài viết

Tóm tắt

Gương sen – phụ phẩm thường bị lãng phí sau quá trình thu hoạch hạt sen nhưng thực tế lại chứa đựng hàm lượng polyphenol phong phú, một hoạt chất có giá trị dược tính cao trong y học cổ truyền. Với mong muốn làm tăng hàm lượng polyphenol trong cao chiết từ gương sen, công trình nghiên cứu này đã chỉ ra được các yếu tố ảnh hưởng đến quá trình hấp phụ và giải hấp polyphenol bằng nhựa D 101. Nhựa D 101 có khả năng hấp phụ tốt các hoạt chất, giá thành thấp, tái sử dụng được nhiều lần sau khi giải hấp giúp giảm thiểu chi phí và hạn chế các ảnh hưởng đến môi trường. Chính vì thế, nhựa D 101 là sự lựa chọn tốt nhất phục vụ cho việc làm giàu polyphenol có trong cao chiết gương sen. Với các điều kiện tối ưu được xác định bao gồm dung dịch mẫu 10.000 ppm, dung môi hòa tan ethanol 80 %, thời gian hấp phụ 30 phút, giải hấp trong ethanol 96 % và thời gian giải hấp 30 phút. Vì vậy, việc sử dụng nhựa D 101 đã làm tăng hàm lượng polyphenol trong cao chiết gương sen lên 110,5  0,71 mg GAE/g, đã mở ra tiềm năng ứng dụng cao chiết gương sen trong các sản phẩm dược liệu và thực phẩm chức năng.

Chi tiết bài viết

Tài liệu tham khảo

Bộ Y tế. (2017). Dược điển Việt Nam V (Tập 2). Hà Nội: NXB Y học.
Castro-Muñoz, R., Yáñez-Fernández, J., & Fíla, V. (2016). Phenolic compounds recovered from agro-food by-products using membrane technologies: An overview. Food Chemistry, 213, 753-762. https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2016.07.030
Conidi, C., Rodriguez-Lopez, A. D., Garcia-Castello, E. M., & Cassano, A. (2015). Purification of artichoke polyphenols by using membrane filtration and polymeric resins. Separation and Purification Technology, 144, 153-161. https://doi.org/10.1016/j.seppur.2015.02.025
Đặng, T. H. N., Trần, Đ. K., Phạm, D. K., Nguyễn, H. T., & Nguyễn, T. H. H. (2023). Khảo sát hoạt tính kháng oxy hóa dịch chiết gương sen. Tạp chí Khoa học Đại học Đồng Tháp, 12(8), 112-120. https://doi.org/10.52714/dthu.12.8.2023.1159
Đỗ, H. B., Đặng, Q. C., Nguyễn, T. D., Đỗ, T. Đ., Phạm, V. H., Vũ, N. L., Phạm, D. M., Phạm, K. M., Đoàn, T. N., Nguyễn, T., & Trần, T. (2006). Cây thuốc và động vật làm thuốc ở Việt Nam (Quyển 2). Hà Nội: NXB Khoa học và Kỹ thuật.
Hu, T., Wang, F., Zhao, Z., Hu, K., & Zhou, C. (2025). Optimization, purification and antioxidant potential of polyphenol ultrasonic-assisted extraction from pecan'Shaoxing'green husk. Food Production, Processing and Nutrition, 7(1), 20. https://doi.org/10.1186/s43014-024-00296-8
Jeon, J.-S., Park, C. L., Syed, A. S., Kim, Y.-M., Cho, I. J., & Kim, C. Y. (2016). Preparative separation of sesamin and sesamolin from defatted sesame meal via centrifugal partition chromatography with consecutive sample injection. Journal of Chromatography B, 1011, 108-113. https://doi.org/10.1016/j.jchromb.2015.12.062
Ping-xiang, W., Ming, W., Kai-li, D., & Feng, N. (2023). Purification of polyphenols from wormwood by macroporous resin and inhibitory activity of its against α-glucosidase. Food and Machinery, 39(7), 13-19. https://www.ifoodmm.cn/journal/vol39/iss7/3
Phạm, H. H. (2003). Cây cỏ Việt Nam: An Illustrated Flora of Vietnam (Quyển 3). Hồ Chí Minh: NXB Trẻ.
Santos, J. H., Almeida, M. R., Martins, C. I., Dias, A. C., Freire, M. G., Coutinho, J. A., & Ventura, S. P. (2018). Separation of phenolic compounds by centrifugal partition chromatography. Green Chemistry, 20(8), 1906-1916. https://doi.org/10.1039/C8GC00179K
Shen, Y., Guan, Y., Song, X., He, J., Xie, Z., Zhang, Y., Zhang, H., & Tang, D. (2019). Polyphenols extract from lotus seedpod (Nelumbo nucifera Gaertn.): Phenolic compositions, antioxidant, and antiproliferative activities. Food science & nutrition, 7(9), 3062-3070. https://doi.org/10.1002/fsn3.1165
Singleton, V. L., Orthofer, R., & Lamuela-Raventós, R. M. (1999). [14] Analysis of total phenols and other oxidation substrates and antioxidants by means of folin-ciocalteu reagent. Methods in enzymology, 299, 152-178. https://doi.org/10.1016/S0076-6879(99)99017-1
Tungmunnithum, D., Pinthong, D., & Hano, C. (2018). Flavonoids from Nelumbo nucifera Gaertn., a medicinal plant: Uses in traditional medicine, phytochemistry and pharmacological activities. Medicines, 5(4), 127. https://doi.org/10.3390/medicines5040127
Wang, D., Wang, S., Du, Q., Wang, N., Liu, S., Wang, X., & Jiang, J. (2014). Optimization of extraction and enrichment of steroidal alkaloids from bulbs of cultivated Fritillaria cirrhosa. Biomed Res Int, 2014, 258402. https://doi.org/10.1155/2014/258402
Wang, X., Wang, S., Huang, S., Zhang, L., Ge, Z., Sun, L., & Zong, W. (2019). Purification of polyphenols from distiller’s grains by macroporous resin and analysis of the polyphenolic components. Molecules, 24(7), 1284. https://doi.org/10.3390/molecules24071284
Yang, X., Ru, Z., Wang, H., Ben, A., Lin, H., Zhang, X., Li, C., & Yang, L. (2022). Resin adsorption as a means for the enrichment and separation of three terpenoid indole alkaloids: Vindoline, catharanthine and vinblastine from Catharanthus roseus extracts in ionic liquid solution. Industrial Crops and Products, 187, 115351. https://doi.org/10.1016/j.indcrop.2022.115351
Yu, Q., Fan, L., & Li, J. (2020). A novel process for asparagus polyphenols utilization by ultrasound assisted adsorption and desorption using resins. Ultrasonics Sonochemistry, 63, 104920. https://doi.org/10.1016/j.ultsonch.2019.104920
Zhang, Y., Shufen, L., Xiwen, W., & Xing, Z. (2007). Macroporous resin adsorption for purification of flavonoids in Houttuynia cordata Thunb. Chinese Journal of Chemical Engineering, 15(6), 872-876. http://dx.doi.org/10.1016/S1004-9541(08)60017-8

Các bài báo được đọc nhiều nhất của cùng tác giả